우연히 지나가다가 보았는데... 영상을 올린 시간도 오래 되었네요... 영상에서 조직 슬라이드 제작방법은 대학원생들이 제작과정을 후배 대학원생들에게 전수 하였나 봅니다... 조금 더 수정하시면 훨씬 쉽고 빠르게 제작할 수 있습니다... 혹시 조언을 얻으시려면 임상병리학과 전공하신 분들에게 여쭤 보시면 많은 도움이 되실 겁니다.... 열심히 하시는 모습이 보기 좋습니다.... 만약 formalin fixed paraffin embedded block으로 슬라이드 제작 방법에 대해 좀 더 알고 싶으시면 제가 조언을 드릴 수도 있습니다.... 그리고 block을 cutting 후 flotation bath에서 slide에 붙인 후 굳이 현미경으로 접힌 부분 확인하실 필요 없습니다.... cutting된 ribbon을 50% ethanol에 띄운 후 바로 45도씨 flotation bath에 띄우면 ribbon은 접히지 않습니다...
조언 감사드립니다! 다른 sample에서는 에탄올 사용한 적도 있었지만 저 영상에서는 제가 에탄올 사용하지 않았던 이유는 몇장 건질수 없는 sample인데 에탄올에 띄우니까 접히지는 않았지만, 빙글빙글 돌면서 bath벽에 부딪히거나 띄워놓은 리본끼리 섞여버려서 사용하지 않았었습니다! 앞으로 조직 section 실험 하게 되면 더 넓게 공부해보겠습니다 감사합니다ㅎㅎ
@@ogiri 예...^^ 답장 감사합니다... 저는 조직병리를 20 여년 간 하였고., 현재 학교에서 학생들 가르치고 있어요...^^ 제 전문 분야이기도 하여 말씀 드린겁니다... paper 작성하실 때 조직병리 결과는 필수 사항이지요... 혹시 실험하시다가 조직병리, 면역병리, 분자병리, 동결절편, H&E staining, special staining 등 병리분야 검사법에 관한 궁금한 점이 있으시면 메일 주시면 제가 아는 선까지는 알려 드릴께요... 열심히 하셔서 원하는 결과 얻으시기를 기원합니다...^^
반갑습니다! 15초 정도는 괜찮습니다! 섹션하면서 부서진 적은 없었습니다. 굳이 15초라고 적은 이유는 저희 실험실에서 쓰는 몰드와 플라스틱 링이 딱 맞지 않아서 굳히지 않고 진행하게 되면 파라핀이 새어버려서 일이 지연됐기 때문입니다. 몰드에 딱 맞는 링이 있다면 굳이 기다리지 않아도 파라핀이 새지 않을겁니다! 감사합니다ㅎㅎ
안녕하세요! 동영상 잘 봤습니다! 최근 조직관련 작업을 많이 하면서 파라핀 섹션을 많이 하는데, 혹시 섹션 후 물 or 70% EtOH에 띄운 후 다시 따뜻한 물에 띄우는 이유가 있나요? 또 하나 궁금한 건 물 or 70% EtOH에 섹션 된 절편을 띄워두는 시간이 길어도 상관없나요?
반갑습니다! 물이나 에탄올에 띄우는 이유는 접혀져있는 파라핀을 펴기 위해서 입니다! 사실 물보다는 70% 에탄올이 더 효과가 있는데, 그 이유는 다시 따신 물위에 옮기는 작업에서 팽그르르 돌면서 더 잘 펴지기 때문입니다. 하지만 저는 그렇게 하면 여러장 띄울 경우 순서가 겹치거나 얇은 섹션은 오히려 망가지는 일이 발생하여 물을 더 선호합니다! 띄워두는 시간은 크게 상관이 없고 본인 섹션하시는 타이밍에 맞춰 건져내시면 되겠습니다 감사합니다ㅎㅎ
으음.. 10% 포르말린과 4% formaldehyde를 같은 뜻으로 쓰인다고 알고 있는데, 그외에 푸른님 말씀하신 5% 포르말린은 사용해보지 않아서 잘 모르겠습니다만 보통은 고정을 상온에서 하루정도 overnight하거나 좀더 오래 보관해야하는 경우 4도씨 보관을 합니다! 실험 일정에 따라 최장 한달정도 보관해본적 있는데 저는 괜찮았지만, 이전에 다른분은 특정 염색을 진행해야하는 경우 포르말린이 영향을 줄수 있다고 하시는걸 들어본 적 있어서, 푸른님 이후 실험 종류에 따라서도 보관기간이 달라질 수 있을것 같습니다! 보통은 H&E를 진행하는데 이 염색같은경우 보관기간이 크게 영향을 끼치진 않습니다!
저는 골격근을 주로 다루진 않지만 옆방 연구원님 하시는거 보면 파라핀 침투과정에서 문제가 있을 수도 있어요! 블럭 만들기 이전에 알코올부터 시작해서 파라핀까지 돌리는 그 프로세싱에서 파라핀에서 좀 더 오래두는게 좋을 수도 있습니다! 아니면 블락 만들기 전 베큠걸리는 인큐베이터에 두시간정도 넣어두면 파라핀 침투가 더 잘돼요!
![[사람들] 병리과에서는 무슨 일을 할까?](http://i.ytimg.com/vi/awC0CsZLGRs/mqdefault.jpg)
![[세포 실험] 세포 배양, Cell culture](http://i.ytimg.com/vi/h5ypXuPCsWY/mqdefault.jpg)
![[Western Blot] 웨스턴 블롯 전반적인 과정 설명 : 기본편](/img/1.gif)
관련영상 찾기도 힘든데, 전세계에서 만든 영상중 가장 잘 만드신거 같네요.
저에게 한줄기 빛같은 이영상.....
혹시 조직 트리밍 영상도 있나여????
실험이 어려워서 일반인이 보기엔 난해한 부분이 있는데 영상에서 똑뿌러지게 잘 설명 해주네요~ 그리고 4:44초 (인터뷰형식)부분 좋아요 이뻐요 분량 늘려주시면 좋겠어요 .
^^ 도전에 응원합니다.~~
오오 아주 이해하기 쉽네요ㅋ 이거 돌려보면서 기계쓰면 될듯!
9:01 잘 안들려서 안경을 꼈습니다. 좋네요
우연히 지나가다가 보았는데... 영상을 올린 시간도 오래 되었네요... 영상에서 조직 슬라이드 제작방법은 대학원생들이 제작과정을 후배 대학원생들에게 전수 하였나 봅니다... 조금 더 수정하시면 훨씬 쉽고 빠르게 제작할 수 있습니다... 혹시 조언을 얻으시려면 임상병리학과 전공하신 분들에게 여쭤 보시면 많은 도움이 되실 겁니다.... 열심히 하시는 모습이 보기 좋습니다.... 만약 formalin fixed paraffin embedded block으로 슬라이드 제작 방법에 대해 좀 더 알고 싶으시면 제가 조언을 드릴 수도 있습니다....
그리고 block을 cutting 후 flotation bath에서 slide에 붙인 후 굳이 현미경으로 접힌 부분 확인하실 필요 없습니다.... cutting된 ribbon을 50% ethanol에 띄운 후 바로 45도씨 flotation bath에 띄우면 ribbon은 접히지 않습니다...
조언 감사드립니다! 다른 sample에서는 에탄올 사용한 적도 있었지만 저 영상에서는 제가 에탄올 사용하지 않았던 이유는 몇장 건질수 없는 sample인데 에탄올에 띄우니까 접히지는 않았지만, 빙글빙글 돌면서 bath벽에 부딪히거나 띄워놓은 리본끼리 섞여버려서 사용하지 않았었습니다! 앞으로 조직 section 실험 하게 되면 더 넓게 공부해보겠습니다 감사합니다ㅎㅎ
@@ogiri 예...^^ 답장 감사합니다... 저는 조직병리를 20 여년 간 하였고., 현재 학교에서 학생들 가르치고 있어요...^^ 제 전문 분야이기도 하여 말씀 드린겁니다... paper 작성하실 때 조직병리 결과는 필수 사항이지요... 혹시 실험하시다가 조직병리, 면역병리, 분자병리, 동결절편, H&E staining, special staining 등 병리분야 검사법에 관한 궁금한 점이 있으시면 메일 주시면 제가 아는 선까지는 알려 드릴께요... 열심히 하셔서 원하는 결과 얻으시기를 기원합니다...^^
@@동섭이-g9r 안녕하세요.. 말씀해주신 분야로 조언을 구하고 싶은데.. 메일 주소를 알 수 있을까요?
@@동섭이-g9r 안녕하세요 댓글을 다신 후 시간이 오래 지났지만 고민 후 도움을 요청드리고 싶어서 댓글 남깁니다.. 혹시 메일 주소를 알 수 있을까요??
영상 기다리고 있었어요! 혹시 영상 업로드하시는 날이 따로 정해져 계신가요?
그리고 대학원진학 준비에 대한 영상도 보고 싶습니다!
영상은 아직 따로 업로드날이 정해져있진 않아요..! 실험일정이 워낙 변동스러워서8ㅅ8 알람설정 해주시면 너무 감사하겠습니다~!
대학원진학에 관한 영상 곧 준비해볼게요 감사합니다ㅎㅎ
옥이리님 오늘도 배우고 갑니다 ㅋㅋㅋㅋㅋㅋㅋ
앗ㅋㅋㅋㅋ 또 시작된건가요 ㅋㅋㅋㅋ
아 저 익숙한 라이카...오토...프로세서...
이 과정에서 포르말린으로 고정한다는게 무슨 과정이고 포르말린이 무슨 역할을 하는지 알수 있을까요?? 그리고 포름알데히드를 적게 사용하는 이유가 무엇인지 알 수 있을까요??
오오!! 영상 한번에 살펴보기 좋네용 혹시파라가드 구매처 알 수 있을까욥??
Paraffin-Cleaner (XF-1) 이라는 제품입니다! 다양한 제품 나올거에욥 아무거나 쓰셔도 괜찮습니다ㅎㅎ
오... 파라가드ㄷㄷ 탐나네요 나도 주문해야겠어요
그쵸ㅇㅇ 뀨짱이 흘리고 간거 헬젤과그레텔처럼 주서놨움
으악 파라핀 블럭 자를때 골무껴요ㅜㅜ 손조심 ㅎㄷㄷ
골무.. 쌤이 준 골무가 저한테 작아서 손가락 끝이 파래져요...8ㅅ8 ㅋㅋ근데 요즘은 손 많이 안다쳐용 걱정하지마새오!ㅇㅂㅇ
안녕하세요! 궁금한점이 있어서 댓글 드립니다 ㅎ혹시 파라가드 구매처 알 수 있을까요?
Paraffin-Cleaner (XF-1) 이라는 제품입니다! 검색하시면 다양한 제품 많이 있을텐데 사실 비슷한 제품 아무거나 쓰셔도 효과는 비슷할겁니다!
paraffin은 grade가 따로 정해져 있을까요? 예를들어 Histology grade(세포배양하는 용도)를 사용해야한다든지,,,
grade는 잘 모르겠지만 제가 사용했던거는 grade나눠진것 없이 tissue embedding 적혀있는 paraplast를 사용했었습니다!
안녕하세요! 영상 잘 보았습니다 병원에서 처방을 보면 파라핀블록 1-9개, 파라핀블록 10개이상이렇게 나뉘는데 파라핀을 10개이상하는경우는 어떤경우인가요? 보통은 1-9개를 하는거죠?
안녕하세요! 병원처방이 어떤건지는 잘 모르겠지만 저는 병리과는 아니었구 동물실험 하는 일반 실험실이었어서 블록 갯수는 50개일때도있고 100개일때도있고, 다양했습니다!
임베딩할때 라벨한 저 종이는 그냥 종이인가요??? 나중에는 노란색으로 변하는 것 같길래요!! 뭐쓰시는지 궁금해요ㅠ
네 그냥 일반 종이에요! 저는 이면지 남은거 갈갈이 잘라서 사용합니당
색이 변하는 이유는 알코올-자일렌-파라핀 들어갔다 나오면서 그렇게 되더라구요! 별거 아닙니다ㅎㅎ
@@ogiri 아 감사합니다ㅠㅠ 이해됐습니다!! 종이가 안찢어지는군요ㅠㅠ 감사합니당!!🌸💛
영상보고 궁금한 점이 있습니다! 혹시 cold plate에 15초 정도 두었을때 블록에 crack이 있지는 않나요? ㅠ
반갑습니다!
15초 정도는 괜찮습니다! 섹션하면서 부서진 적은 없었습니다. 굳이 15초라고 적은 이유는 저희 실험실에서 쓰는 몰드와 플라스틱 링이 딱 맞지 않아서 굳히지 않고 진행하게 되면 파라핀이 새어버려서 일이 지연됐기 때문입니다.
몰드에 딱 맞는 링이 있다면 굳이 기다리지 않아도 파라핀이 새지 않을겁니다!
감사합니다ㅎㅎ
@@ogiri 설명 감사드립니다~내일 포매하는데 한번 진행해보도록 하겠습니다~ 감사합니다!!
안녕하세요! 동영상 잘 봤습니다! 최근 조직관련 작업을 많이 하면서 파라핀 섹션을 많이 하는데, 혹시 섹션 후 물 or 70% EtOH에 띄운 후 다시 따뜻한 물에 띄우는 이유가 있나요? 또 하나 궁금한 건 물 or 70% EtOH에 섹션 된 절편을 띄워두는 시간이 길어도 상관없나요?
반갑습니다!
물이나 에탄올에 띄우는 이유는 접혀져있는 파라핀을 펴기 위해서 입니다! 사실 물보다는 70% 에탄올이 더 효과가 있는데, 그 이유는 다시 따신 물위에 옮기는 작업에서 팽그르르 돌면서 더 잘 펴지기 때문입니다. 하지만 저는 그렇게 하면 여러장 띄울 경우 순서가 겹치거나 얇은 섹션은 오히려 망가지는 일이 발생하여 물을 더 선호합니다!
띄워두는 시간은 크게 상관이 없고 본인 섹션하시는 타이밍에 맞춰 건져내시면 되겠습니다
감사합니다ㅎㅎ
혹시 섹션 하고 h&e 염색 후 현미경으로 조직을 관찰할때 참고할만한 서적이 있을까요..? ㅠㅠ
저는 서적을 따로 보진 않고 그때그때 필요한 조직을 서칭해서 찾아보는 편입니다!
예를 들어 구글에 lung histology, h&e staining 이렇게 검색하면 사진 포함 논문도 잘 나오더라구요. 저는 방법이나 원리 볼때는 프로토콜논문 찾아보는 편입니다!
@@ogiri 감사합니다 ㅎㅎ : )
저는 트리밍 할때 조직부분이 나오면 빠르게 자르라고 하던데 선생님께서는 천천히 자르시네요!! 혹시 자르시다가 조직이 접히거나 하지않나요 천천히 하면???
천천히 할때도 있고 빠르게 할때도 있는데, 조직에 따라 (knee라던가)블럭이 잘 안잘릴때는 빠르게 하면 잘 잘리더라구요! 영상의 조직은 lung인데 펴면서 천천히 뜨고 최대한 주름지지않게 섹션하는 편입니다!
@@ogiri 또 하나질문이요! 조직 고정시간은 보통 몇시간 하시나요!
조직 고정은 conical tube에 조직 부피의 20배정도의 포르말린 담은 다음 조직 담고 상온이나 4도씨 냉장보관 오버나잇 합니다! 여기서 오버나잇은 보통 12시간을 얘기하고 오후에 실험 끝낸다음 다음날 출근해서 자로 수세 들어가는 스케줄로 하고 있어요!
조직을 슬라이드에 올리고 말렸는데 조직이 갈라지면서 일어나네요 ㅜㅜ 뭐가 문젤까요 조직 처리는
문제가 없다고 보는데 업체에서 블록과 섹션을 이미 맡겨서 진행했고 남은 블록을 제가 좀더 깎은 거거든요
조직에 파라핀 침투가 덜돼서 일어나는거거나, 얼마 남지 않은 조직을 잘라서 파라핀에 비해 너무 두껍게 잘렸거나, 워머 온도가 너무 높으면 그렇게 될수도 있어요!
오기리님 혹시 편집프로그램 뭐쓰시나요?
저는 프리미어 프로 씁니다!
10% 포르말린 고정할 때 쥐 장조직의 경우 몇시간 정도 방치해야하나요? 혹시 포르말린 농도를 5%정도로 낮게하고 고정시간을 길게해도되나요?
으음.. 10% 포르말린과 4% formaldehyde를 같은 뜻으로 쓰인다고 알고 있는데,
그외에 푸른님 말씀하신 5% 포르말린은 사용해보지 않아서 잘 모르겠습니다만 보통은 고정을 상온에서 하루정도 overnight하거나 좀더 오래 보관해야하는 경우 4도씨 보관을 합니다! 실험 일정에 따라 최장 한달정도 보관해본적 있는데 저는 괜찮았지만, 이전에 다른분은 특정 염색을 진행해야하는 경우 포르말린이 영향을 줄수 있다고 하시는걸 들어본 적 있어서, 푸른님 이후 실험 종류에 따라서도 보관기간이 달라질 수 있을것 같습니다! 보통은 H&E를 진행하는데 이 염색같은경우 보관기간이 크게 영향을 끼치진 않습니다!
선생님 자막 태두리를 좀더 굵게하면 가독성이 좋아질것 같습니다
재밌겟다 하고싶다
나 1학년때 쥐 뇌를 저렇게 파라핀에 굳혀서 목걸이 만들고싶다고 들고다니던 누나가 있었는데
옹 테두리..! 참고할게요!
도대체 어떤 누나시길래 뇌를 그렇게.....(입틀막)ㅋㅋㅋ
혹시 시작할 때 bgm 뭔지 알 수 있을까요?
BigBadBeats 에서 candy라는 곡인데 돈주고 샀습니다!
오 이거 맞아요!
수의사인데 비임상쪽 검색하다가 발견해서 실동센터 영상 비롯한 다른 영상들도 재밌게 보고 있습니다.
골격근 파라핀 섹션하고 있는데 조직이 계속 부서져요.. ㅠㅠ 조언 얻을수있을까요??
저는 골격근을 주로 다루진 않지만 옆방 연구원님 하시는거 보면 파라핀 침투과정에서 문제가 있을 수도 있어요! 블럭 만들기 이전에 알코올부터 시작해서 파라핀까지 돌리는 그 프로세싱에서 파라핀에서 좀 더 오래두는게 좋을 수도 있습니다! 아니면 블락 만들기 전 베큠걸리는 인큐베이터에 두시간정도 넣어두면 파라핀 침투가 더 잘돼요!
프로세싱 기계를 보는데 왜 편의점 호빵기계가 떠오르지 ㅋㅋㅋㅋ 이제 겨울인가...
크 조치조치...